怎样合理地进行ANNEXIN V-PI凋亡检测?

作者&投稿:慈邓 (若有异议请与网页底部的电邮联系)
请教ANNEXIN V-PI法检测凋亡的原理和相关试剂盒使用步骤~

有关Annexin -PI凋亡细胞的检测使用的是BIODAI的较多,具体的步骤如下:1) 悬浮细胞:300g,4℃,离心5min,收集细胞。贴壁细胞:用不含EDTA的胰酶消化后,300g,4℃,离心5min,收集细胞。胰酶消化时间不宜过长(见注意事项),以防引起假阳性。2) 用预冷的PBS洗涤细胞两次,每次均在300g,4°C离心5min,收集1-5×105细胞。注意:在洗涤细胞时,尽量避免损伤细胞。3) 加入100µl 1×Binding Buffer重悬细胞。4) 加入5µl Annexin V-FITC和5µl PI,轻轻混匀。 5) 避光、室温反应10 min。6) 加入400µl 1 x Binding Buffer,混匀,样品在1小时内用流式细胞仪或荧光显微镜检测。

做Annexin V及PI染色不能够固定细胞。因为固定的实验操作实际上会杀死细胞,所以不能够用于关于细胞调亡的检测。

经过固定的细胞,将会对Annexin V和PI同时呈现强染色,给你假阳性结果。

所以你的时间点多也只好辛苦一点了。只有在每个时间点用活细胞染色,并且染色后一个小时内一定要检测记录好实验结果,不然时间拉长,细胞离开培养皿后逐渐调亡,染色会逐渐增强,还是给你假阳性。

为了比较多个时间点,在分批操作上得多费心保持步骤和时间的一致了。为了保险,最好给每个时间点设置一个对照组。

博凌科为生物科技-为你解答:用流式检测凋亡时,PI受时间的影响很大,因标记了PI后会加大细胞毒性,随着时间延长会导致PI的染色增加,特别是检测早期凋亡时,如果时间延长 除了会导致在流式细胞仪上的细胞分群差距加大外,误差会明显加大。一般的说明书都会标明,PI在上机前5分钟加,然后在一个小时内检测。一般每组实验一次可以先做三个复孔,上机前5分钟加PI,最好在半小时内检测完毕。这时可以先分析下三个复孔的差异。等待摸索的实验条件成熟后,每组实验一次可以做6~8个复孔,然后做统计学分析。严格说来,当做出统计学差异时,这样的实验还要重复三次。但是因检测凋亡时,受细胞状态,PI染色时间,流式检测时间,以及每次实验时的误差等的影 响外,很难保证能够完全重复出上次的结果,甚至即使在保证了实验条件几乎相同的情况下,每次重复的差异也会出现加大的情况。这时可以适当重复2~3次,尽 量使差异减小。方法:http://ask.bbioo.com/ask/show-4435.html


  标记了PI后会加大细胞毒性,随着时间延长会导致PI的染色增加。
  也称为“固缩坏死”、“程序性细胞死亡”或“细胞自杀”,是由基因介导的一系列变化,细胞依靠它来主动地引起它自身的破坏。正常起消除老化细胞或未参与免疫反应的淋巴细胞的凋亡过程,如发生病理性干扰,可对肿瘤生成起作用。凋亡最初由特征性的形态变化来确定,包括:DNA的程序性降解、染色质浓缩、细胞缩小和碎裂。它可以是生理性的,或由化疗药物及放射诱发(来自希腊文,apoptosis,描写深秋枯叶掉落的现象)。


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