mtt法测脾淋巴细胞增殖实验中的培养基需要加双抗吗

作者&投稿:谏空 (若有异议请与网页底部的电邮联系)
脾淋巴细胞增殖实验~

不知楼主的问题解决了没有,我最近做脾细胞增殖实验,用2*10^6铺板,72小时培养,MTT作用4小时后加DMSO几乎没有颜色显示,看到楼主的帖子,才想到也有可能是细胞死亡的原因。不知楼主后来是怎么解决的,求教~

(1) 细胞数量减少,在文献和我们自己的实验中,常采用每孔细胞为1×105个。
(2) 我曾采用Sigma公司的产品,终浓度5ug/ml。
(3) 采用BALB/C鼠,因为BALB/C比较纯,得到的结果一致性也好。
(4) 接种细胞之前进行台盼兰染色计算活细胞数,从而心中有底。
(5) 不需要正交实验考查几个影响因素的最佳组合,因为MTT测定淋巴细胞增殖已是先人多次摸索实验得出的实验条件。
(6) yunnandali战友没有给出测定波长,一般实验中采用570nm作为测定波长,630nm作为参比波长。
(7) 还有你的药物本身是什么类型的,估计它本身与刀豆蛋白发生反应的可能性不是很大。
(8) 实验中,我建议能对细胞体系进行离心的话,还是尽量离心,因为淋巴细胞是悬浮的。我们的实验中,在加入MTT之前,首先离心一下,吸出一些上清(保持培养体系始终是相同体积),继续孵育4h后,再离心(甲簪完全沉到底部),然后轻轻将上清弃去(倒转96孔板,轻拍。不过我怕将甲簪拍出来,一般还是使用移液枪将上清全部吸出)。
(9) 我还是不能明白你的发帖题目的意思——“药物刺激小鼠脾淋巴细胞增值”(非增值,是增殖),我们的免疫药理学实验中一般是考虑药物对丝裂原刺激的淋巴细胞增殖的影响,如果你想考察药物本身对淋巴细胞增殖的刺激能力,应该使用ConA作阳性对照才是,但是你的实验不是这样。估计你还是想观察药物对ConA作用下淋巴细胞增殖能力的影响作用。
(10) 将你的实验再重复几次,看看结果是不是一直都是这样。

可以不加,有时候加了会有拮抗作用。1)24孔板内以5~8x104cells/孔的密度铺板,铺足够量的孔以进行后续的梯度实验。细胞孵育过夜;(2)准备筛选培养基-含不同浓度嘌呤霉素的新鲜培养基(如0-15μg/mL,至少5个梯度);(3)细胞孵育过夜后加入筛选培养基,孵育细胞;(4)约2-3天更换新鲜的筛选培养基;(5)每日监测细胞观察存活细胞比例。嘌呤霉素的最佳作用时间一般在1-4天之间。(6)最小的抗生素使用浓度就是指从抗生素筛选开始1-4天内杀死所用细胞的最低筛选浓度。嘌呤霉素筛选稳定转染细胞(1)day0:24孔板内以5~8x104cells/孔的密度铺板,孵育过夜;(2)制备筛选培养基:含有最佳筛选浓度嘌呤霉素(由杀灭曲线确定)的新鲜培养基;(3)day1:筛选第一天,去除旧的培养基,加入一定量MOI的病毒颗粒;(加入无血清培养基的总量必须充分覆盖住细胞。)(4)病毒转导后约6-8h,再添加1ml完全培养基(血清和双抗,如果已经使用双抗。)到细胞内,然后孵育过夜;(5)病毒转导后48h,使用嘌呤霉素筛选培养基替换旧的完全培养基。孵育。(6)约每2-3天替换新鲜配制的筛选培养基;(7)每天检测细胞并观察活细胞生长比例,以及turboGFP表达的水平及所占比例。在某一个时间点几乎所用存活细胞都可以表达TurboGFP。嘌呤霉素最佳的作用时间在3-10天之间。注:病毒的MOI越高,每个细胞含有的shRNA拷贝和嘌呤霉素耐性基因越多。在做嘌呤霉素筛选时,需记住越高MOI,含越多pac拷贝的细胞能耐受更高的嘌呤霉素浓度。调整嘌呤霉素的浓度去筛选预定量的转导细胞,但是嘌呤霉素的量不能低于杀死曲线建立的最低浓度


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