单增李斯特菌生物膜制备方法

作者&投稿:况富 (若有异议请与网页底部的电邮联系)
~ 单增李斯特菌生物膜制备方法:
1、将-80℃冻存的菌株接种于固体BHI培养基,置于37℃培养18h进行活化。挑取单菌落于5mL液体BHI培养基中,37℃、200r/min培养过夜。次日,按1:100的比例转移至1L新鲜液体BHI培养基中继续培养至OD600为1.0。
2、2.2超滤浓缩法提取膜囊泡当细菌培养至OD600为1.0时,4℃、6000r/min离心20min收集上清液,经0.45μm或0.22μm滤器过滤,除去细胞碎片等杂质后转移至截留相对分子质量100kD的超滤浓缩管中,4℃、4000r/min离心20min。取浓缩液,经4℃、31174r/min离心3h后弃上清,用10mL的磷酸缓冲液悬浮沉淀,重复离心一次后,将沉淀重悬于1mL磷酸缓冲液中,经0.22μm滤器过滤后进行无菌检验,鉴定其无菌后于-80℃保存,即为提取的膜囊泡。将所提取的EGDe、EGDeΔprfA和EGDeΔprfA+pERL3-prfA*的膜囊泡分别表示为EGDe-MVs、ΔprfA-MVs和prfA*-MVs。
3、Optiprep密度梯度离心法提取膜囊泡Optiprep梯度离心液用DMEM分别配制成浓度为25%、30%、35%、40%和45%。吸取经过超滤浓缩法(同1.2.2)提取的1mL产物转移至Beckman离心管中,再依次加入2mL的45%、40%、35%、30%和25%Optiprep,于4℃、31174r/min进行超速离心15h。离心完毕后,小心收集30%-35%的组分于Beckman离心管中,并加入10mL磷酸缓冲液,再次进行超速离心。重复离心3次后弃上清,将沉淀重悬于1mL磷酸缓冲液中,经0.22μm的滤器过滤后进行无菌检验,鉴定其无菌后于-80℃保存,即为提取的膜囊泡。
4、BCA法测定膜囊泡的蛋白浓度并计算膜囊泡的产率MVs蛋白浓度的具体测定方法参见BCA蛋白浓度测定试剂盒说明书。利用稀释平板涂布法统计OD600为1.0时的菌落数,以每1013个CFU获得的蛋白量(μg)为膜囊泡的产率。
5、负染电镜观察膜囊泡的形态将铜网浸泡在MVs样品中吸附大约20min后取出,用滤纸与铜网垂直接触以除去多余液体。随后将铜网浸泡在PTA染液中染色5min,取出后于阴凉处自然干燥2-3d,即可用于电镜观察。
6、对细菌生物被膜形成的影响细菌生物被膜的培养及检测参照冯飞飞等[10]的方法。将3株细菌的MVs稀释至同一浓度(0.2mg/mL)后,按照1:1的比例分别取100μL相应的MVs加入到含100μL菌液(同种菌株或者不同种菌株)的96孔板中。另设置2组不含MVs的参照:一组加入等量菌液,另一组加入等量的磷酸缓冲液。待上述操作完毕后,将96孔板置于37℃分别培养24、48和72h。培养相应时间后,酶标仪测定其OD600值,以检测其生长情况;随后弃去各孔培养基,所生成的生物被膜经蒸馏水洗涤,室温干燥后,用1%乙二酸铵结晶紫染色,并测定其OD595的光吸收值。所获得的试验数据使用Origin8和SPSS22进行分析处理。结晶紫染色后的生物被膜直接置于倒置显微镜下观察,拍照记录。
7、膜囊泡的溶血活性检测溶血活性的测定参考于新惠等[12]的方法。将来源于不同菌株的MVs稀释至同一浓度(0.2mg/mL)后,分别取一定量的MVs加入含1mL红细胞悬液的离心管中,阴性对照组加入等量的磷酸缓冲液,阳性对照组加入等量的无菌水;另取等量的MVs加入1mL红细胞悬液后再添加2mmol/LDTT。将以上离心管置于37℃孵育3h后,室温、2600r/min离心5min,吸取800μL上清于一次性比色皿中测定OD543的值,即为MVs的溶血活性值。
8、膜囊泡对棉铃虫幼虫体重、存活率和化蛹率以及幼虫发育时间的影响选取生理状态基本一致的4龄棉铃虫幼虫置于冰上麻醉2h待用[13]。将来源于不同菌株的MVs稀释至同一浓度(0.2mg/mL)后,吸取5μLLm-MVs自幼虫第一腹足下注入,对照组注入等量磷酸缓冲液,每组18条幼虫。注射完成后每隔24h称取幼虫体重,并统计存活率、化蛹率及幼虫发育时间(自购买之日起至末龄),数据的计算方法为:化蛹率=蛹数/试虫总数×100%;存活率=存活数/试虫总数×100%。


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