求助:细胞培养中的问题

作者&投稿:亢汤 (若有异议请与网页底部的电邮联系)
求助一下,细胞培养中的一个小问题~

细胞培养中的一个小问题
如果,在镜下观察细胞,生长状态良好,与黑点出现前相比,没有任何变化,那么,黑点的出现可能与以下几种情况有关:
1)细胞生长过老,破碎的细胞残骸;
2)血清质量不好,反复冻融的结果;
3)配制培养基的PH值偏高,不宜细胞生长;
4)配制培养基的水质、容器不合格。
可应用离心、过滤的方法去除这些黑点。
细胞培养中如何防止黑点生成:
1) 掌握细胞传代的最佳时机,细胞切勿生长过老;
2) 尽可能地减少血清冻融次数;
3) 培养基无需37℃水浴;
4) 培养基保持最佳PH值7.0- 7.2;
5) 严格控制配制培养基的水质,容器定期刷洗。

酶液对细胞培养很重要,常用的消化酶有胶原酶和胰酶(不同型号),还有混合酶液,原代细胞品牌专家齐氏生物认为酶液的浓度和消化时间对细胞培养至关重要。一般酶消化的问题,主要集中在酶液浓度和消化时间上,具体可以追问,希望能帮到你!

有什么问题也没说啊。下面是关于细胞培养的资料,你看一下吧

设施器材

设施:超净台、恒温培养箱、倒置显微镜、液氮储存罐、电热鼓风干燥箱、冰柜、电子天平、恒温水浴槽、离心机、压力蒸汽消毒器。

器材:

一、玻璃器材

培养皿、滴流瓶、刻度吸管、离心管、培养瓶、烧杯、量筒、三角烧瓶

二、塑料器材

多孔培养板、培养皿、培养瓶

三、橡皮器材

橡皮制品(最好是硅制品)做各种瓶或试管的塞子、盖子。

四、金属器材

剪刀、镊子、手术刀、解剖刀、血管钳、组织镊、眼科镊及各种型号针头

五、其他物品

纱布、注射器和针头


培养基

几种常用细胞培养基产品

⒈ BME(basal medium eagle)基础伊格培养基

⒉ MEM

⒊ DMEM

⒋ IMDM

⒌ RPMI-1640

⒍ M199

⒎ Mccoy's 5A

⒏ F10\ F12 \DMEM混合F12(三)几种常用细胞培养配套试剂的配置(缓冲液、平衡盐溶液等)

1、无钙、镁、离子溶液(1000ml)

氯化钠(NaCl)8g磷酸二氢钠、(NaH2PO4H20)0.05g、氯化钾(KCl)0.2g、碳酸氢钠(NaHCO3)1g、柠檬酸三钠(Na3C6H5O7,H20)1g、葡萄糖1g、加去离子水或双蒸水至1000mL

2、PBS(Phosphate-Buffered saline)磷酸盐缓冲液

甲液:0.2mol/L磷酸氢二钠溶液、磷酸氢二钠(无水)28.4g、氯化钠8.77g加去离子水或双蒸水至1000mL

乙液:0.2mol/L磷酸二氢钠溶液、磷酸二氢钠(无水)2.4g、氯化钠8.77g加去离子水或双蒸水至1000mL

甲、乙液于4℃保存,使用时按表3-2所示比例,配制成所需pH浓度,高压灭菌后室温保存。

3、Hanks液(HBSSHank‘s Balanced salt solution)

⑴母液甲(20x)配法

①NaCl(A.R)160g、KCl(A.R)8g、MgSO4.7H2O(A.R)2g、MgCl.6H2O(A.R)2g依次溶于800mL双蒸水中,前一物质溶后再加后一种。

②CaCl2(A.R)2.8g溶于100mL双蒸水中,溶时不断搅拌(此液应单配,单溶)。

待上述两溶液中的“溶质”全溶后,将它们混合,再用双蒸水补至1000mL,向其中加2mL氯仿作为防腐剂,置4℃保存。

⑵母液乙(20×)配法

①Na2HPO4.12H2O(A.R)3.04g、KH2PO4(A.R)1.20g、葡萄糖(A.R)20.0g溶于800ml双蒸水中。

②0.4%酚红液0.4g酚红放在玻璃研钵后加0.01N、NaOH11.28mL,直到全部溶解,移入100mL容量瓶中,加水至100mL,过滤,pH为7.4,4℃保存。

待上述各“溶质”完全溶解后,用双蒸水补至1000mL,其中加氯仿2mL作防腐剂,置40℃保存。

3)使用液(1×)配法

取母液甲和母液乙各一份,加双蒸水18份,分装后,塞好瓶塞,挂上标志。以115℃高压灭菌25分钟(以免葡萄糖破坏),置室温后4℃保存,可使用几个月。临用前,用7.5%NaHCO3调至所需pH。

4、Eagle's液(EBSSEagle's Balanced salt solution)

是一种在二氧化碳(CO2)环境中短期维持细胞活性的平衡盐溶液,可用于细胞解离前的清洗、细胞或组织的运输、细胞计数时稀释、溶液的配置等。

5、HEPES液

生物缓冲液,化学性质稳定,在PH7.2~7.6范围内,比NaHCO3缓冲液的缓冲能力更强。

6、NaHCO3缓冲液

常规缓冲体系的一部分,但是不稳定,易受空气中CO2的含量而改变PH值,影响缓冲效果。


具体步骤

一、复苏[1] 

1.把冻存管从液氮中取出来,立即投入37℃水浴锅中,轻微摇动(注意防止盖子不紧致使液体进入冻存管)。液体都融化后(大概1-1.5分钟),拿出来喷点酒精放到超净工作台里。

2.把上述细胞悬液吸到装10ml培养基的15ml的离心管中(用培养基把冻存管洗一遍,把粘在壁上的细胞都洗下来),1000转离心5分钟。

3.把上清液倒掉,加1ml培养基把细胞悬浮起来。吸到装有10ml培养基的10cm培养皿中前后左右轻轻摇动,使培养皿中的细胞均匀分布。

4.标好细胞种类和日期、培养人名字等,放到37℃的5%CO2培养箱中培养,细胞贴壁后换培养基。

5.根据细胞增长速度2-3天换一次培养基。

二、传代

1.培养皿中的细胞覆盖率达到80%-90%时要传代。

2.把原有培养基吸掉。

3.加适当的胰蛋白酶(能覆盖细胞就行),消化1-2分钟。

4.细胞都变圆后加入等体积的含血清的培养基终止消化。

5.用移液枪吹打细胞,让细胞悬浮起来。

6.把细胞吸到10ml或15ml的离心管中,1000转离心5分钟。

7.倒掉上清液,加1-2ml培养基,把细胞都吹起来。

8.根据细胞种类把细胞传到几个培养皿中。一般,癌细胞分5个,正常细胞传3个。继续培养。

三、冻存

把细胞消化下来并离心(同上)。用配好的冻存液把细胞悬浮起来,分装到灭菌的冻存管中,静止几分钟,写明细胞种类,冻存日期。4℃30min,-20℃30min,-80℃过夜,然后放到液氮灌中保存。

冻存液的配制:70%的完全培养基+20%FBS+10%DMSO.DMSO要慢慢滴加,边滴边摇。




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