实时荧光定量pcr数据如何统计?

作者&投稿:潜宙 (若有异议请与网页底部的电邮联系)
实时荧光定量PCR的结果该怎样分析?~

1、如果有标准曲线,按照标准曲线计算;
2、一般都是相对量,则用delta delta CT方法来计算;
3、引物或探针降解:可通过PAGE电泳检测其完整性;
4、模板量不足:对未知浓度的样品应从系列稀释样本的最高浓度做起;
5、看CT值是分析荧光定量PCR最直观的一个数据,CT值一般在35左右就失去参考价值了,平时我们实验室用BIODAI-PCR荧光定量法测得的扩增曲线的起跳值基本在30左右。

扩展资料:
PVR的循环参数:
1、预变性;
模板DNA完全变性与PCR酶的完全激活对PCR能否成功至关重要,加热时间参考试剂说明书。
2、变性步骤;
循环中一般95℃,30秒足以使各种靶DNA序列完全变性,可能的情况下可缩短该步骤时间。变性时间过长损害酶活性,过短靶序列变性不彻底,易造成扩增失败。
3、引物退火;
退火温度需要从多方面去决定,一般根据引物的Tm值为参考,根据扩增的长度适当下调作为退火温度。然后在此次实验基础上做出预估。退火温度对PCR的特异性有较大影响。
4、引物延伸;
引物延伸一般在72℃进行(Taq酶最适温度)。但在扩增长度较短且退火温度较高时,本步骤可省略延伸时间随扩增片段长短而定,一般推荐在1000bp以上,含Pfu及其衍生物的衍生设定为1min/kbp。
5、循环数;
大多数PCR含25-35循环,过多易产生非特异扩增。
6、最后延伸;
在最后一个循环后,反应在72℃维持10-30分钟.使引物延伸完全,并使单链产物退火成双链。
参考资料来源:百度百科—实时荧光定量PCR

1、如果有标准曲线,按照标准曲线计算。
2、一般都是相对量,则用delta delta CT方法来计算。
3、举例如下:对照组基因A的CT值为20, 内参(比如βactin)CT值15。实验组基因A CT值18,内参CT值14。
4、首先算加样量:delta CT=15-14=1。2的1次方是2。也就是说实验组的加样量是对照组的2倍。基因A: delta CT=20-18=2。2的2次方是4。也就是说基因A的量在实验组是对照组的4倍。但是由于加样量是2倍,所以4处以2=2,最后的相对量是2倍。
5、几点注意:必须确定扩增的特异性,只有相同目标的CT值才能相减(扩增效率有可能不同),2的某次方只是理论值,实际扩增效率低于2,最好不用Syber Green。

扩展资料:
PCR原理:
1、PCR技术的基本原理类似于DNA的天然复制过程,其特异性依赖于与靶序列两端互补的寡核苷酸引物。
2、PCR由变性-退火-延伸三个基本反应步骤构成:
①模板DNA的变性:模板DNA经加热至93℃左右一定时间后,使模板DNA双链或经PCR扩增形成的双链DNA解离,使之成为单链,以便它与引物结合,为下轮反应作准备;
②模板DNA与引物的退火(复性):模板DNA经加热变性成单链后,温度降至55℃左右,引物与模板DNA单链的互补序列配对结合;
③引物的延伸:DNA模板-引物结合物在72℃、DNA聚合酶(如TaqDNA聚合酶)的作用下,以dNTP为反应原料,靶序列为模板,按碱基互补配对与半保留复制原理,合成一条新的与模板DNA链互补的半保留复制链。每完成一个循环需2~4分钟,2~3小时就能将待扩目的基因扩增放大几百万倍。
参考资料来源:百度百科--PCR反应

首先你这样做出来的统计没有意义。
应该是至少3次独立实验,而不是重复3次PCR。
如果3次试验,每次重复3次(取平均值算一次)。然后先定各个基因在对照组的值为一,再算出其他组该基因的相对量,比如内参CT值一样(都是15),而TNF的CT值对照组是20,而模型组是19,则相对量是2 (对照组为1)。△△ct=(19-15)-(20-15)= -1, 2-△△ ct= 2。
以此类推。
其实你只有3组,2个基因。用ANOVA先算,然后再用t test就可以了。结果表达为TNF:对照组1, 模型组想x± d, 药物组y± d. NF-kB: 对照组1, 模型组想x± d, 药物组y± d. TNF和NF-kB间不需要比较。

请参考我发表的文章:
http://onlinelibrary.wiley.com/doi/10.1021/bp060102e/abstract
如果你提供email, 我可以发全文给你。

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仉符捷克: rt pcr的机器会给出cT值和fluorescence的值,cDNA值自己计算

吉林市17790868314: 实时定量PCR的结果是怎样分析的?
仉符捷克: PCR是聚合酶链式反应,通过反复的变性退火延伸,达到将微量DNA扩增检测的目的.目前实验室里多采用的是实时荧光定量检测,一起可以读取每次循环的荧光强度,并记录达到设定的阈值的循环次数.原始标本含有的DNA量愈多,达到阈值循环数愈小.通过已知浓度的标准品为对照,定量分析样本所含的目的DNA量.

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仉符捷克: Sybergreen可以和所有核酸结合,没有特异性.所以要保证特异性的话,最好用其他的方法.扩增体系中加入模板DNA的体积,比如同时10微升的体系,对照组加1微升DNA,实验组加2微升DNA,则实验组的加样量是对照组的2倍.看CT值是分析荧光定量PCR最直观的一个数据,CT值一般在35左右就失去参考价值了,平时我们实验室用BIODAI-PCR荧光定量法测得的扩增曲线的起跳值基本在30左右

吉林市17790868314: 如何分析荧光定量pcr实验结果? -
仉符捷克: 如果是realtime做表达量,用excel的制图,将每个个体的Ct值平均数做出柱状图就可以了.如果你还做了标曲的话,就用制图中的散点图看R2值.其实这些功能做定量PCR的时候电脑程序应该会自动分析才对.具体情况具体分析.

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仉符捷克: 做各组比较即可,一般t检验或者方差分析

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仉符捷克: ct,是从基线到指数增长的拐点所对应的循环次数,仪器中给出的ct就是你每个孔实际的ct值 ct mean,是你相同样品的几个重复的CT值得平均值 如果是做的相对定量,用CTmean的结果就可以了,计算方法就是R=2-ΔΔCt,现在很多仪器你只要设置的时候明确标出内参基因和目的基因,这个结果也是会有自带软件给计算出来的.如果你是做绝对定量,那更方便,你只要在仪器设置的时候把你的标准品含量依次输入,最后软件会自动生成标准曲线什么的,你最后只要分析og sq的结果就可以了.

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仉符捷克:[答案] 做绝对定量的话横坐标是初始模版的拷贝数,纵坐标是CT值

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