如何定量分析免疫组化和western blot 的结果,求具体步骤
信息安全专业考研方向有:
1. 大数据方向:大数据方向主要是进行对海量数据的管理和处理,传统的数据处理模式在大数据面前由于其冗长的处理时间而失去意义,因而需求新的算法及处理模式来应对纷繁的数据,大数据方向的入行门槛相对较高。
不过伴随着前人算法的愈发成熟,门槛也在逐步降低,就业形势也相对优秀,大数据和云计算技术的组合上限和下限都很高,其学习难度也不低。
2. 人工智能方向:人工智能方向更多的是处在理论上的发掘,真正落到实处的技术其实相对较少,这也导致了其有着极高的门槛和相对于普通人较低的下限,但其下属的技术例如NLP,机器学习,文本识别,图像识别等技术仍有着很好的前景,此方面的技术专业需求面很广,不仅仅是技术,数学,离散等知识也是其必备科目。
对于初学者友好度低,在职业前景方面更多的趋向于算法分析架构此类,前景良好。
3. 传统计算机方向:互联网公司的高红利无疑给纯软件方向带来了红利,不过现在随着中低端人才的饱和,互联网的高薪也慢慢了偏向于真正的技术人才,传统的计算机方向稳扎稳打也能获得很好的前景,根据个人的兴趣选择相关的方向,才能有更好的动力来前进从而达到自己的目的。
扩展资料:
信息安全专业考研方向具体到学院学习上,它的研究方向和侧重点大不相同。值得注意的是,除了信息安全基础专业,还有与文科艺术类、理工科相交叉的专业。
比如计算机专业与文科艺术类相交叉的就有:计算机美术设计专业,网页设计专业,影视动画设计专业,环境艺术设计专业等;
与理工科相交叉的专业有:数学与应用数学专业,自动化专业,信息与计算科学专业,通信工程专业等等。可见,计算机专业的学习内容十分广泛,并且计算机应用又在不断地产生出新的专业,专业前景也是不错的。
参考资料来源:百度百科-信息安全专业
哈工大作为首批985 211院校,为各行各业均培养了大量高精尖人才,从业领域涉及政界、商界、学术界等等。从工大走出的人才无论是在大的方面——奉献社会、报效国家,还是在小的方面——做好本职工作,回报母校的栽培均做的较为出色。这里仅列举介绍两位优秀校友。
王兆力 现任黑龙江省委常委、哈尔滨市委书记。王书记1984-1987年期间,就读于工大管理学院,并取得管理工程工学硕士学位。我曾听过王书记在工大的讲座,主要关于哈尔滨人才培养及相关优惠政策。列举了工大及市里如何加强对优秀人才的培养及管理,倡导学在工大,积极参与到美丽龙江建设中来。听过讲座之后,每个人都得到了精神鼓舞。
李继耐 工大为航天事业输送了大批优秀人才,航天员杨利伟曾在学校演讲时说过:“在我工作的周围有近40%的人是哈工大毕业生”。载人航天工程总指挥李继耐就是其中的一员。李继耐教授毕业于工大工程力学专业,从普通士兵做起,经过自己一步一步的努力,一路晋升,做到中共中央军委委员的位置。
这种不畏艰难,一路向前摸索的人生态度值得我们每一个人学习。除了解放军管理方面,李继耐教授对载人航天工程也做出了巨大贡献,使得我国的航天事业,达到国际前沿水平,提升了我国的军事实力与国际竞争力,使得我国向军事化强国的过渡期大大缩短。
我有个WB条带分析软件简介,或许对你有帮助。
凝胶定量软件Quantity One使用简介
1 内容简介
凝胶电泳是每个做分子生物学的同学天天都要打交道的基本技术。电泳之后的信息处理与电泳本身同样重要。目前有大量软件可以用于分析电泳结果,比较有名的比如BandScan、BandLeader、Sigma Gel等等。今天要向大家介绍的是来自Bio-Rad的1D凝胶定量软件Quantity One(Bio-Rad还有一个做2D凝胶分析的软件PDQuest)。
2 Quantity One的定量方法
Quantity One的分析功能顾名思义主要用来进行凝胶或者培养皿的荧光定量分析。它的分析功能或者说分析方式主要有4种:泳道/条带轨迹定量法;等高线直接定量法;菌落计数;分子量测定
这三种方法中使用最为方便也是最为广泛的应该是等高线定量法(Volumn Contour)。它通过半自动描绘电泳条带的等高线边缘来得到等高线区域内部面积,再将该面积乘以区域内平均光密度值得到条带内部总的信号量。当然这种分析方法的弊病显而易见:无法同等得排除不同泳道的背景亮度;等高线的绘制处于“半自动”状态,即需要人为判断作为等高线标准的电泳条带的边缘;最致命的是在几个电泳条带距离十分接近的时候几乎无法绘制单一条带的轮廓(常出现连续的几个条带等高线相连而无法分离出单独条带的轮廓)。
三种方法中个人感觉最为科学和严谨的应该是泳道/条带轨迹定量法(Trace Tracking)。这种方法使用起来步骤较为繁琐,必须通过泳道识别---电泳条带识别两个连续的步骤才能进行定量。然而这种方式的最大优点在于它可以完全抛弃人为主观因素进行全自动定量。他的定量方式为:首先根据不同电泳条带的光密度值绘制光密度曲线,然后计算光密度曲线下面积作为电泳条带的定量根据。大家可能会问他能不能排除泳道背景?答案是肯定的,它能够最大程度的排除不同泳道之间的背景差异,让各个泳道上的不同电泳条带在一条几乎相同的起跑线上进行对比。这个背景排除功能是等高线法无法做到的(等高线法也有基本的背景排除办法,但是和泳道/条带轨迹定量法的背景排除不是一个等级的。等高线法只能排除同一泳道上的背景,而不能均等的排除不同泳道的背景)。另外泳道/条带轨迹定量法还可以结合Gauss Model Bands对紧密相连的电泳条带进行分析,而这种条带也是等高线法无法分析的。我们此次重点学习这个方法。
第三个分析功能是菌落计数(Colony Counting)。这个功能其实很实用,可以分析蓝白筛选的结果。但是很奇怪我的电脑居然无法运行这个功能, 因此无法向大家介绍了。
另外Quantity One还可以通过回归曲线测定
3 Quantity One的基本常用菜单操作
下面让我们了解一下Quantity One常用的基本菜单操作。
打开文件:由于Quantity One是Bio-Rad的硬件配套软件,因此Quantity One可以自动输入来自Bio-Rad公司的凝胶分析仪的数据。具体支持哪些硬件大家可以在“Edit-Preference-Imagers”里面设置。如果您的实验室没有采用Bio-Rad的硬件设施也没关系。您只要将电泳图片用ACDSee等程序转换为TIF图片格式就可以被Quantity One识别了。注意Quantity One只支持8位和16位灰度的TIF文件。
PHP代码:
Quantity One似乎有一个小bug,就是在按“Open”之后并没有立刻弹出资源管理器让你选择目标文件的位置。其实你只要将鼠标在屏幕右下方点击一下,资源管理器就会乖乖弹出来了.
PHP代码:
Quantity One只能分析白色背景+黑色条带的电泳图。而我们正常情况下得到的一般都是黑色背景+白色条带的电泳图。我们可以在“Image-Invert data中将图片色彩进行反转,然后便可以用Quantity One进行分析了.
文字注释:Quantity One提供基本的文字注释功能。您可以在您的电泳图片上记录您的分析结果比如电泳条带的分子量、光密度值、物质的量等等。这个功能可以通过“Edit-Text Overlay Tools”来实现。在弹出的浮动工具栏中选择“ABC”或者“”就可以进行文字输入和画标记线的操作。
光密度工具:在“View-Plot Density”的下级菜单中大家会见到几个和电泳条带光密度值相关的显示选项。大家可以分别选择不同的选项感受一下它们之间的差别。选择方法是点击相应的下级菜单比如“Plot Cross Section”,然后将变成带一个蓝色感叹号的鼠标移到您想知道光密度的位置,点击一下就会显示该处的光密度相关信息。在下面这幅图片中我们可以看见两条黄线交叉处的电泳条带的相关信息。上方的一串曲线是不同泳道之间在同一水平线上的光密度比值曲线;左边是黄线交叉处所在泳道的几个电泳条带的光密度分布情况。
3D Viewer:在“View-3D Viewer”菜单中大家会看到一个有趣的功能叫做3D Viewer。这个玩意按照Bio-Rad的说法可以辅助辨别几条紧密相连在一起的电泳条带的分布情况。大家只要选择了这个命令后鼠标就会一个“+”型,然后将+型移动到您感兴趣的位置,拖动鼠标画出一个正方形区域,然后用鼠标双击,Quantity One就会将这块区域按照gauss分布规律渲染成一个三维模型,颇有意思。
4 Quantity One的基本背景排除功能
最开始的时候我们就说过Quantity One的等高线定量模式也有一种比较基本的背景排除方法。这个方法同样也适用于泳道/条带定量模式。现在我们就来学习这个方法。基本背景排除的功能位于“Image-Substract backgroud...”和“Image-Filter Wizard...”这两个菜单。
Image-Filter Wizard:这个功能是对原始图片做一些初步的加工,主要是除去一些图片上的“斑点”。这些斑点主要有两种类型:一种是深色的“胡椒面”型和浅色的“食盐”型,两种斑点都可以毫不犹豫地去除。从“Image-Filter Wizard...”菜单调出向导菜单后选择“pepper”和“salt”,下面两个选项可以按照程序默认的选项,然后“OK”就可以完成这第一步的降噪过程。
Image-Substract backgroud:这个功能是真正对图片背景进行清理的工具(区别于“Image-Filter Wizard...”的降噪模式)。只是这种清理是一种“全局”型的清理,即它以相同的参数对每条泳道进行背景清理。然而在清理方式上它还是可以分成两种不同的方式:
Backgroud Box:一种是以一个局部小面积为标准背景,将整张电泳图片上所有比该区域光密度值低的区域全部漂白。这种发式称为“Backgroud Box”。操作时用鼠标选中对话框下部左侧的“Backgroud Box”按钮,然后用鼠标在电泳图片上选择一块色彩接近于背景色,色泽比较均匀的区域,用鼠标拖动画出一个正方形。释放鼠标后程序就会立即对电泳图片进行降低背景的处理;
Backgroud Stripe:相对于“Backgroud Box”来说是一种更加智能化的处理方式。它特别适用于梯度凝胶,即凝胶浓度由上至下依次变化。由于梯度胶的光密度值在一定距离内不断变化,因此如果采用“Backgroud Box”的方法除背景就会发生偏差。Quantity One此时提供一种随着凝胶浓度变化而变化的除背景方式就是“Backgroud Stripe”。和“Backgroud Box”类似,选择右下角的“Backgroud Stripe”按钮,然后用鼠标沿着电泳泳道拖放形成一个狭长的剪影带(Stripe),这个剪影带内部的光密度值顺着泳道逐渐升高或降低。Quantity One根据这个Stripe可以动态的对整张图片的背景进行剪影。比如泳道起始处光密度低,那么Quantity One在此处的剪影值也降低;随着Stripe向前延伸,光密度值逐渐升高,Quantity One也同样不断加大剪影的强度。这样一来就可以排除由于梯度胶带来的背景不一致的影响因素。
5 Quantity One的电泳泳道分龉δ?--创建泳道
前面说过Quantity One之所以强大是因为它具有的泳道/条带轨迹定量法。现在我们就来学习一下如何在电泳图片上创建泳道(Lane)以及如何进行针对不同泳道的背景排除。
创建泳道:首先打开我们要分析的电泳图片(以蛋白质电泳为例)。然后选择“Lane-Auto Frame lanes”。这时如果您的电泳图片比较标准的话,Quantity One就会自动识别出每条电泳泳道的位置,而且将各个泳道的路径用一条红线标画出来;
如果您对软件自动标记的泳道不甚满意,您可以通过“Lane-Edit Frame”下级各个子菜单提供的功能对泳道框架位置、大小等进行调节。调节方法就是通过鼠标的拖放来实现,大家可以自己体验一下;
如果您只需要分析其中几个泳道的数据而不想其他泳道的标记干扰您的视线,您可以通过“Lane-Single Lane-Remove Lane”删除您不需要的泳道的标记。
PHP代码:
不是所有的电泳图片的泳道都能够被Quantity One自动识别。在不能自动识别的情况下,Quantity One就会弹出对话框告诉您它不能识别泳道。这时大家就需要手工绘制电泳泳道。方法和上面一样,同过“Lane-Single Lane-Creat Lane”来实现。只要用鼠标在您的电泳图片上顺着待标记的泳道的中轴线拖放就可以绘制出该泳道的标记红线.
6 Quantity One的电泳泳道分析功能---排除背景
前面说过Quantity One之所以强大是因为它具有的泳道/条带轨迹定量法。现在我们就来学习一下如何在电泳图片上创建泳道(Lane)以及如何进行针对不同泳道的背景排除。
排除背景:首先请大家注意,这个排除背景和前面我们在“Image”菜单中使用的“Substruct Backgroud”有所不同。后者排除背景的对象是整个电泳图片而非将各个电泳泳道的背景分别进行排除。现在我们要学习的这个命令可以帮助我们分别排除各个泳道(也可以将全部泳道用相同标准进行排除)的不同的光密度背景。这个功能对我们以后的分析影响甚大,大家一定好好学习。
首先我们要将我们的电泳图片进行前面谈到的泳道识别,不管是自动方式还是手工识别。然后选择“Lane-Lane Backgroud...”命令。选择该命令后,鼠标即变成一个绿色的“+”,将鼠标移到您打算进行背景排除的泳道(比如下图中的第4泳道),点击左键一下,立刻就会弹出如下图所示的对话框。
其中“Optical Density”显示得是该泳道光密度值的分布情况。大家会注意到这个分布曲线并不是紧贴着纵轴,而是位于纵轴上方分布。造成这个“悬空现象”的原因就是该泳道自身存在着一定的光密度“背景”。这个背景的存在导致该泳道上各个电泳条带之间不能处于同一水平进行对比;如果考虑到相邻的其他泳道更是因为不同背景的存在而无法对比不同泳道上的不同电泳条带。如何去除这个背景呢?我们继续看右边的“Lane Backgroud Substruction”对话框。这个对话框的上方“All Lanes”表示可以对所有泳道进行一次性处理;下方的“Selected Lane”表示仅针对此次选中的这个泳道进行处理(我们选中的是第4泳道)。我们用鼠标选择“Selected Lane”的“Lane On”选项。然后在下面的“Rolling Disk Size”里填上“5”,再按“回车”键。好!大家再来看看现在“Optical Density”中出现了一条紧紧沿着光密度曲线分布的酱色曲线。这条曲线将泳道的背景与电泳条带的光密度分布十分精确的划分开来。
PHP代码:
大家可能会好奇这里的“Rolling Disk Size”指得是什么意思?我们可以将Quantity One提供的去除背景功能想象成是一个滚动的小球。如果这个小球的半径越小,那么它沿着光密度曲线滚动时滚过的路径就越发精细,具体反映在酱色曲线的轨迹越发靠近黑色光密度分布曲线的基线。因此从理论上来说“Rolling Disk Size”的取值越小,它的去除背景效果越好。大家可以试着选择一个较大的值比如80,再来看看此时酱色曲线的轨迹。当然也不能取太小的值。因为如果取值太小,大家可以想象这个十分微小的球就会滚入光密度曲线内部,造成有效阳性信号的损失。个人感觉5~20是一个比较好的取值范围.
OK!我们再在“Lane Backgroud Substruction”对话框的最下方钩选“Show Lane Trace with Backgroud Substructed”,再来看看是不是泳道上所有的背景都被消除了?各个电泳条带是不是完全结合到纵轴上在同一水平进行比较了?
我们对于其他泳道也可以依葫芦画瓢进行类似的背景排除工作。如果大家觉得可以使用同样的标准,即相同的“Rolling Disk Size”进行排除,那么我们可以在“Lane Backgroud Substruction”对话框中选择上方的“All Lanes On(same level)”选项。然后在“Rolling Disk Size”中填上一个合适的值,点击“Done”按钮确认就可以了。此时该电泳图片上所有的泳道都以相同的标准进行了背景去除。不信你可以自己将鼠标点击其他泳道(比如第8道或第1道),你会发现所有泳道的背景均已去除。
7 Quantity One的电泳泳道分析功能---对比泳道
刚才我们已经对电泳图片上的泳道进行了识别和背景去除。现在我们可以利用Quantity One提供的泳道对比功能对同一张凝胶照片上的不同泳道进行对比,看看每条泳道上电泳条带的分布情况。
泳道对比:首先将打开的电泳照片进行前面谈到的泳道识别和去除背景步骤。然后选择“Lane-Compare Lanes”命令,鼠标变成“蓝色感叹号”之后将鼠标移动到您希望进行对比的泳道上(比如下图的第3泳道),左键点击,Quantity One就会立刻探出一张黑色背景的“Compare Lanes”对话框。在这个对话框中红色的曲线代表您选择的泳道的光密度分布曲线。曲线的波峰部分表示位于泳道上的不同电泳条带;波峰的高低象征电泳条带光密度值的大小;波峰的宽窄象征电泳条带的宽度;波峰由左至右表示各个电泳条带顺着泳道由后向前的分布。
PHP代码:
大家请注意这个红色曲线。它不仅仅提供给我们关于泳道上光密度的分布情况,更重要的是在下一步我们对电泳条带进行定量的时候,我们将以每个波峰的曲线下面积作为定量的标准.
我们还可以用鼠标点击其他我们感兴趣的泳道(比如下图中第6、9、14泳道),这时再转到“Compare Lanes”对话框我们会发现Quantity One已经帮我们用不同颜色在同一张图片上绘制出了这4条泳道的对比图。是不是非常PP?
8 Quantity One的电泳条带分析功能---创建条带
前面我们已经识别和分析了电泳图片的泳道,下面我们开始研究电泳条带的问题。首先在这里明确两个名词翻译:“Lane”指电泳泳道;“Band”指电泳条带。在下文中一律使用这两个英文名词来表示这两个意思。
电泳条带的识别:和前面研究Lane一样,首先我们要对Lane上的Band进行识别。识别方式同样分为自动识别和人工识别。自动识别的时候选择“Band-Detect Bands...”命令。这时Quantity One会自动弹出一个“Detect Bands”的对话框(如下图)。
PHP代码:
第一次用Quantity One的朋友可能会发现您的Bands识别以后仅仅是画出了一条红色的粗线,而在上面的演示图片中却是上下括号的形式。其实大家可以在“Band-Band Attributes”选项中设置Bands的显示形式。在下方的“Style”选项卡中选择“Brackets”就会将原来的粗线改为括号形式了.
在上面的对话框中,我们可以指定识别的参数。
如果要自动识别所有Lanes上的Bands就钩选Lands后面的“All”选项;如果仅仅想自动识别某一条Lane上的Bands就钩选“One”,然后在后面的输入框中填上您想识别的泳道号码;
如果仅仅想识别泳道上部分光密度值最强的Bands,可以在“Bands”后面的选项中选择“Limit”,然后填上相应的数目(比如10)。Quantity One就会仅识别该泳道上光密度最大的10条Bands;
如果您发现自动识别的Bands宽度太窄,圈定Band的红色括号内范围小于黑色的光密度影。此时可以使用“Lane Width”命令来调整Bands识别的宽度。用鼠标点击“Lane Width”后面的向上箭头就会发现红色括号逐渐变宽,最后要求其范围略为宽过其包绕的Band影迹;
如果您发现自动识别功能没有识别您想要的Band或者误识别了您不想要的Band,您还可以使用上面的工具栏进行调解。将您的鼠标指向每个图标,Quantity One就会知道弹出一个黄色的提示信息告诉您这个按钮的功能。在此不再继续阐述了。
9 Quantity One的电泳条带分析功能---高斯建模与结果分析
现在我们已经完成了泳道识别、背景去除、条带识别的任务。接下来我们要对Bands进行一些处理,然后就可以进行最终的结果分析了。
高斯建模:大家学过统计学知识后都知道高斯(Gauss)分布是个什么意思,在此我就不多作解释了。Quantity One认为一个理想状态的Band内部的光密度分布应该也服从高斯曲线的特征,正如前面向大家展示的3D Viewer中的图片那样。在我们日常的电泳泳道中经常出现几个相隔很近的Bands(即分子量很接近的几个蛋白或者核酸)在泳道的某个区域成串出现。此时我们很难通过会自等高线的办法精确的描绘出每条Band独立的轮廓。这个时候我们就需要对这些拥挤在一起的Bands进行高斯建模处理。Quantity One能够依据高斯曲线的特征,配合有效的背景去除,将各条紧靠在一起、边界相互融合的Bands描绘成具有独立光密度分布的相互重叠的曲线。如下图所示,原来相互融合的22、23两条Bands经过高斯建模之后变成了两个具有独立分布曲线,相互重叠的Bands。
PHP代码:
高斯建模必须建立在有效的泳道背景去除之后。背景去除的方法可以参见我们前面的方法,即通过“Lane-Lane Backgrouds”的方式进行去除背景。去除背景的时候最好选择Rolling Disk Size小一些的方案。这样背景去除后的光密度分布曲线和高斯建模后的光密度分布曲线才能比较好的吻合。另外高斯建模并不是一个必须的步骤。它仅仅在出现多条Bands紧密排列在一起,以至于无法分辨它们之间的间隔的时候才最有效。如果Bands在泳道上松散的分布则可以不使用高斯建模.
那么如何进行高斯建模呢?很简单!只要执行“Band-Gauss Model Bands...”命令就可以,执行后Quantity One回弹出一个对话框问您要对那条泳道进行高斯建模。请钩选“One”,然后再输入需要建模的泳道代码就可以了(比如下图中的第2泳道);如果选择了“All”则对所有泳道进行高斯建模,当然建模这么多泳道会费一点时间了。
观察结果:执行完高斯建模以后使用“Band-Band Information”命令来观察结果。方法是将变成蓝色惊叹号的鼠标移到刚才已经识别的Band的部位,一个详细的“Band Information”信息框就会立刻弹出来(见下图)。在这幅图中我们必须注意的是“Trace”和/或“Gauss Model Trace”,因为我们刚才辛苦了半天就是为了得到这个数据。这个数据表示的就是Band光密度分布曲线下面积,也就是Quantity One用来表达Band内分子总量的方式。在这个信息框中还有一些重要信息比如“Mol Wt”(分子量);“Quantity/Units”等现在还是空白,咱们下以后的分析步骤中将逐渐填满它们。
PHP代码:
Quantity One有一点让人感到很不明白。它的“Trace”和“Gauss Model Trace”都是表示曲线下面积的,可是使用的单位是OD*mm;而在另外的等高线定量方法中,同样是表示某个区域面积的单位却是OD*mm2.
下面让我们回过头来看看高斯建模之后电泳图片的分析结果到底发生了什么变化。首先是一张没有进行高斯建模的图片,大家可以看到在这张图片中的白框部分,第2泳道的第6个band的光密度曲线黄色部分并不呈高斯对称(少了一部分不是?)。这是因为它一部分和邻近的Band相互融合在一起了。
现在再来对比一下经过高斯建模后的电泳图片分析结果。还是在相同位置,这时代表第2泳道第6个Band的黄色光密度曲线是不是呈完整的高斯对称了?而且后面的“Gauss Model Trace”也不再是“N.A”,而变成了“0.717 OD”,对比上面的“Trace”=0.693 OD,大家想想为什么要大一些呢?
10 Quantity One的电泳条带分析功能---分子量预测
前面我们和大家学习了用Quantity One进行电泳条带定量的基本方法。现在我们暂时转移视线来探讨一下另一个功能,分子量预测。这个功能对于蛋白质而言是分子量预测,对于核酸而言就是核酸大小的预测了。下面我们还是以蛋白质为例来学习。
分子量预测:首先大家必须知道的是分子量的预测是建立在泳道和条带都已经创建好的基础上。我们只是人为的为一些泳道上的条带加上一个已知的标准,然后通过不同泳道和条带之间的对比绘制回归曲线,通过回归曲线的走向来预测特定条带上的分子的分子量。当然如果我们能够在一次电泳中多跑几条不同分子量成分的marker,必然能够提高我们预测的准确性。
下面我们谈谈如何操作。在已经创建好泳道和条带的图片上,执行“Match-Standard”命令,在弹出的“Select Standards”选项卡中选择一个合适的marker。如果您自己已经跑了Marker,那么请选择“New Standard”创建您自己的marker,然后在弹出的“Standard”菜单中输入您的Marker的分子量。如下图在“Standard”中输入一个名称,然后在下面的表格中输入各个Marker的分子量和名称。
输入完成以后用鼠标点击“Type”下面的小箭头(上图鼠标指向的位置),然后把变成绿色加号的鼠标移动到您的Marker泳道上相应的band。例如上图中200KD就移动到第15泳道的200KD的位置,以此类推,将每个Marker都标记上相应的数字。标记完成后,Maker泳道上的Bands就会变成蓝色。
如果您有多条Marker泳道,您可以再多表记几条以提高软件预测的准确性。现在我们执行“Match-Standard Curve”,然后用鼠标随便点击我们想要了解的泳道,Quantity One立刻就会为我们显示出一条曲线,傍边还有一个小的对话框“Std.Curve Options for Proteins”,在这个对话框中“Regression Model”选择“Point to Point Semi-log”或者“Elder-Southern”这两种回归方式;然后钩选傍边的“Show Numerical data of Points”,这时再看那条曲线上是不是已经标注了
一、免疫组化定量分析:
1.图片获取:
使用显微镜拍摄处理后的组织切片,并确保所有图片的拍摄条件(如曝光时间、光源亮度等)相同。
2.图片分析:
使用图像分析软件(如ImageJ)打开图像。
3.设置阈值:
根据背景和染色的强度设置一个阈值,使染色区域可以被区分。
4.测量:
测量阈值以上的区域的面积和强度,得到每个区域的平均强度值。
5.正常化:
使用对照组数据正常化结果,或与其他标记物进行比较。
二、Western Blot定量分析:
1.获得图像:
使用胶片或数字成像系统捕获Blot图像。
2.选择合适的软件:
如ImageJ、Quantity One等进行图像分析。
3.背景减去:
选择一个没有条带的区域作为背景,使用软件减去背景。
4.条带定量:
使用软件工具选择每个条带,并测量其灰度值。
5.正常化:
通常使用内部标准如β-Actin或GAPDH等来正常化所感兴趣的蛋白条带的强度。
6.数据分析:
使用图形或统计软件进行后续数据分析。
免疫组化原理?
随后,这些抗体被用于检测样本中是否存在相同类型的抗原。然而,由于抗原-抗体复合物本身是无色的,因此需要依赖组织化学手段来显现结合区域,以此实现对组织或细胞中未知抗原的定性、定位或定量分析。这就是免疫组化的核心原理,它在医学研究和病理诊断中发挥着关键作用。
免疫组化p16.ki67是什么意思
,对其进行定位、定性及定量的研究,称为免疫组织化学。免疫组化实验中常用的抗体为单抗体和多抗体。单抗体是一个B淋巴细胞分泌的抗体,应用细胞融合杂交瘤技术免疫动物制备。多克隆抗体是将纯化后的抗原直接免疫动物后,从动物血中所获得的免疫血清,是多个B淋巴细胞克隆所产生的抗体混合物。
免疫组化p16(-)ki67+
免疫组化是一种利用抗原与特异性抗体结合的原理,通过化学反应使标记的显色剂(如荧光素、酶、金属离子或同位素)显色,从而对组织细胞内的抗原进行定位、定性和定量分析的技术。在免疫组化实验中,常用的抗体有单克隆抗体和多克隆抗体。单克隆抗体是由一个B淋巴细胞克隆分泌的抗体,通常通过细胞融合杂交...
免疫组化p16+,ki-67是什么意思
4. 免疫组化是一种利用抗原与抗体特异性结合的免疫学原理来检测和组织细胞内特定抗原的技术。这种技术可以通过化学反应,使用如荧光素、酶、金属离子或同位素标记的抗体来显色,从而实现对蛋白质或多肽抗原的定位、定性和相对定量分析。5. 免疫组化技术包括几种不同的方法:- 免疫荧光细胞化学技术:使用...
免疫组化结果怎么看?
免疫组化技术是通过抗原抗体反应,结合化学显色剂来研究组织细胞内的抗原,如多肽和蛋白质,用于定位、定性和定量分析,这在免疫组织化学和免疫细胞化学中被广泛应用。对于化验检查结果,CD3、CD43呈弥漫性阳性,CD79a和CD20则为灶状阳性,CD30散在阳性,而TdT阴性。这些标记物通常在淋巴瘤中有所体现。
干货分享 | 多重荧光免疫组化技术 (mIHC)
在科学研究的前沿,多重荧光免疫组化(mIHC),堪称免疫组化技术的革新之作,它通过酪氨酸信号放大技术,实现了对组织样本中多个目标抗原的精准定量分析。相较于传统的IHC,mIHC不仅提升了分析的精确度,还实现了多因素的共定位,为揭示生物信息提供了前所未有的深度洞察。以往的IHC主要侧重于定性评估,...
活检后为什么免疫组化
免疫组化,是运用医学免疫学基本基本原理——抗原和抗体反映,即抗原体与抗原特异性融合的基本原理,根据化学变化使标识抗原的显色剂(荧光素、酶、金属离子、放射性核素)着色来明确组织体细胞内抗原体(活性多肽和蛋白),对其开展精准定位、判定及相对性定量分析的科学研究,称之为免疫力组织有机化学技术性...
免疫组化和免疫荧光的区别有哪些?它们相应的服务有哪些?
3.实验步骤:免疫荧光染色步骤简单,而酶免疫组化方法较为复杂,多了DAB显色过程。4.染色后的标本保存:免疫荧光染色后的标本一般短时间拍照,时间长了荧光衰退;而酶免疫组化染色标本可以长期保存。5.免疫组化结果除了知道蛋白是在细胞浆还是细胞膜表达高些,还可以用软件做相对定量分析。6.免疫荧光得到的...
免疫组化ar是什么意思
4. 染色过程中使用的技术包括荧光素、酶、金属离子和同位素等,这些技术能够帮助识别和分析组织细胞内的抗原,从而实现对其进行定位、定性和定量分析。5. 免疫组化检查能够为医生提供肿瘤的原发位置、恶性程度和预后情况等重要信息,同时对药物选择和使用具有指导意义。6. 免疫组化检查包含多种指标,针对不...
elisa是免疫组织化学技术吗
这是与免疫组化的主要区别,操作上 开始需要将抗原或抗体结合到固相载体表面,从而使后来形成的抗原-抗体-酶-底物复合物粘附在载体上,这就是“吸附”的含义。免疫组化和elisa所用到的原理 大致相同,只是因为所检测的样品不同,从而在操作方法上有所不同。Elisa多用于定量分析,其灵敏度非常高。
姓学尼膜: 免疫印迹如果结合凝胶成像的话(带相关分析软件),他是可以定量的,但多用来做体外培养的细胞;免疫组化就是针对组织切片的,可以定性、半定量(即看出个大小的关系).如果你要是做动物实验组织的话,最专业也是最对口的还是做免疫组化.这个两种方法检测出来结果的意义是一样的,都能说明抗癌的具体通路.
红山区17754361116: 蛋白定量时western和ELISA哪个好?
姓学尼膜: 当然是ELISA好了,ELISA在科研上主要用于定量,而Western blot主要用于定性,当然,根据灰度可以半定量,但这个准确性就差很多了,还有免疫组化,这个是用于定位的.免疫学三大工具,免疫组化、Western、ELISA,分别用于定位,定性和定量,各有各的功能.
红山区17754361116: 凝胶酶谱和western blot的区别? - ?
姓学尼膜: 主要是方法不同吧 酶谱法的基本过程是先将样品进行SDS-聚丙烯酰胺(SDS-PAGE,含0.1%明胶)电泳分离,然后在有二价金属离子存在的缓冲系统中使样品中的 MMP-2(基质金属蛋白酶-2)和MMP-9 恢复活性,在各自的迁移位置水解凝胶...
红山区17754361116: 请问用免疫组化半定量分析某组织中某种蛋白的表达,优缺点是什么? - ?
姓学尼膜: 这三个方法检测蛋白灵敏度不同,逐渐增高,免疫组化理论上可以半定量,但是得看你检测的指标敏感度如何,如果本来表达就低,根部定不了量,WB可以定量,建议如果做科研建议先做组化,在做wb
红山区17754361116: 如何使用Image J 软件进行western蛋白定量分析 - ?
姓学尼膜: 把条带圈出来选measure 出来的数据中那个mean的数值就是白度 值小表示蛋白浓度越大 这样比较就行了
红山区17754361116: western blot怎么做定量分析 - ?
姓学尼膜: westernblot结果的分析是一个主观性比较强的过程western是一个半定量的实验. 所以一般是作为定性的验证试验首先要分析的就是有无目的蛋白的条带,有无条带就是一个定性的结果,这种分析是比较简单. 当然这其中还要综合考虑内参等对照样品.