标定标准溶液和测定样品所用方法是否应该相同 如果不同会怎样

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测定不同的样品,为什么要用不同的方法标定edta~

EDTA能与很多金属离子反映,反应的条件大多都需要控制在一定的PH范围内,如果超出了反应所要求的范围,就会造成反应不完全、无法准确测定样品中的金属离子含量,因此,对测定不同的金属离子,就会有不同的标定方法,并且一定要严格控制反应时的PH值,加缓冲溶液的目的就是为了能够控制PH值在一定范围内,使标定结果更加准确无误。

滴定误差要求:以不确定度表示,≤ ± 0.2% 。
滴定误差分类:主要包括称量误差、量器误差、方法误差。
(1) 称量误差
每次称量误差:± 0.0001g,一份试样称量误差±0.0002g。
若相对误差 ±0.1%,则每一份试样的称量至少为0.2g。
(2)量器误差
滴定管读数误差:± 0. 01ml,一份试样量取误差± 0. 02ml。
若相对误差±0.1%,则每一份试样体积量至少为±20 ml
(3)方法误差:主要是终点误差。其原因有:指示剂不能准确地在化学计量点时改变颜色;标准溶液的加入不可能恰好在指示剂变色时结束;接近终点时半滴半滴加入 控制不好;指示剂本身会消耗少量标准溶液做空白试验;杂质消耗标准溶液。

扩展资料:
相关注意事项:
1、移液管及刻度吸管一定用橡皮吸球(洗耳球)吸取溶液,不可用嘴吸取。
2、滴定管、量瓶、移液管及刻度吸管均不可用毛刷或其他粗糙物品擦洗内壁,以免造成内壁划痕,容量不准而损坏。每次用毕应及时用自来水冲洗,再用洗衣粉水洗涤(不能用毛刷刷洗),用自来水冲洗干净,再用纯化水冲洗3次,倒挂,自然沥干,不能在烘箱中烘烤。
如内壁挂水珠,先用自来水冲洗,沥干后,再用重铬酸钾洗液洗涤,用自来水冲洗干净,再用纯化水冲洗3次,倒挂,自然沥干。
3、需精密量取5、10、20、25、50ml等整数体积的溶液,应选用相应大小的移液管,不能用两个或多个移液管分取相加的方法来精密量取整数体积的溶液。
4、使用同一移液管量取不同浓度溶液时要充分注意荡洗(3次),应先量取较稀的一份,然后量取较浓的。在吸取第一份溶液时,高于标线的距离最好不超过1cm,这样吸取第二份不同浓度的溶液时,可以吸得再高一些荡洗管内壁,以消除第一份的影响。
参考资料来源:百度百科-滴定分析法

维生素C是一种已糖醛基酸,有抗坏血病的作用,所以被人们称做抗坏血酸,主要为还原型及脱氢型两种,广泛存在于植物组织中,新鲜的水果、蔬菜,特别是枣、辣椒、苦瓜、柿子叶、猕猴桃、柑橘等食品中含量较多.它是氧化还原酶之一,本身易被氧化,但在有些条件下又是一种抗氧化剂. 维生素C(还原型)纯品为白色无臭结晶,熔点190~192℃,溶于水或乙醇中,不溶于油剂.在水溶液中易被氧化,在碱性条件下易分解,在弱酸条件中较稳定,维生素C开始氧化为脱氢型抗坏血酸(有生理作用).如果进一步水解则生成2,3-二酮古乐糖酸,失去生理作用. 根据它具有的还原性质可以测定维生素C的含量.常用的测定方法有(1)2,6-二氯靛酚法 (还原型VC)(2)2,4-二硝基苯肼法 (总VC)(3)碘量法(4)荧光分光光度法一、2,6-二氯靛酚滴定法 1、原理:还原型抗坏血酸还原染料2,6-二氯靛酚,该染料在酸性中呈红色,被还原后红色消失.还原型抗坏血酸还原2,6-二氯靛酚后,本身被氧化成脱氢抗坏血酸.在没有杂质干扰时,一定量的样品提取液还原标准2,6-二氯靛酚的量与样品中所含维生素C的量成正比. 2、试剂 ⑴ 1%草酸溶液:称取10g草酸,加水至1000ml; ⑵ 2%草酸溶液:称20g草酸,加水至1000ml; ⑶ 维生素C标准液:准确称20mgVC溶于1%草酸中,并稀释至100ml,吸5ml于50ml容量瓶中,加入1%草酸至刻度,此溶液每毫升含有0.02mgVC; ⑷ 0.02%2,6-二氯靛酚溶液:称取2,6-二氯靛酚50mg,溶于200ml含有52mg碳酸氢钠的热水中,冷却后,稀释至250ml,过滤于棕色瓶中,贮存于冰箱内,应用过程中每星期标定一次. 标定一:吸标液(VC)5ml于三角瓶→加6%KI溶液0.5ml→加1%淀粉3滴→用0.001N KIO3标液滴定到淡兰色. 计算: 抗坏血酸浓度(mg/ml)= (V1 × 0.088)/ V2 V1 - 滴定时消耗0.001N KIO3标液的体积(ml) V2 -维生素C重量(g) 0.088 -1ml0.001N KIO3标液≈维生素C的量(mg/ml)标定二:吸5ml已知浓度V C标液 → 加5ml1%草酸 → 用染料2,6-二氯靛酚滴定至溶液呈粉红色,在15秒不褪色为终点计算:每毫升2,6-二氯靛酚相当于维生素C的毫克数等于滴定度(T) T= (C × V1)/ V2 C - 维生素C的浓度(mg/ml) V1 -维生素C的体积(ml) V2 -消耗2,6-二氯靛酚的体积(ml) ⑸ 0.001N KIO3标液:吸0.1N KIO3溶液5ml→于500ml容量瓶内→加水至刻度,每毫升相当于VC0.008mg; ⑹ 0.5%淀粉溶液; ⑺ 6%KI溶液; 3、操作方法 ⑴ 提取:称样50g→加2%草酸100ml→到入捣碎机中→处理→过滤→颜色若深可加白陶土 ⑵ 滴定:吸5ml样液→于三角瓶→用染料滴定至粉红色→15秒内不褪色计算: VC(mg/100g)=(V × T)/ W × 100 V -消耗染料体积(ml) T -1ml染料所能氧化维生素C的毫克数 W- 滴定时所有滤液中含有样品的克数 4、注意事项 ⑴ 所有试剂的配制最好都用重蒸馏水; ⑵ 滴定时,可同时吸二个样品.一个滴定,另一个作为观察颜色变化的参考; ⑶ 样品进入实验室后,应浸泡在已知量的2%草酸液中,以防氧化,损失维生素C; ⑷ 贮存过久的罐头食品,可能含有大量的低铁离子(Fe2+),要用8%的醋酸代替2%草酸.这时如用草酸,低铁离子可以还原2,6-二氯靛酚,使测定数字增高,使用醋酸可以避免这种情况的发生; ⑸ 整个操作过程中要迅速,避免还原型抗坏血酸被氧化; ⑹ 在处理各种样品时,如遇有泡沫产生,可加入数滴辛醇消除; ⑺ 测定样液时,需做空白对照,样液滴定体积扣除空白体积. 荧光法 1.原理 样品中还原型抗坏血酸经活性炭氧化成脱氢型抗坏血酸后,与邻苯二胺(OPDA)反应生成具有荧光的喹喔啉(quinoxaline),其荧光强度与脱氢抗坏血酸的浓度在一定条件下成正比,以此测定食物中抗坏血酸和脱氢抗坏血酸的总量. 脱氢抗坏血酸与硼酸可形成复合物而不与OPDA反应,以此排除样品中荧光杂质所产生的干扰.本方法的最小检出限为0.022 g/ml. 2.适用范围 GB12392-90 本方法适用于蔬菜、水果及其制品中总抗坏血酸的测定 3.仪器 3.1.实验室常用设备. 3.2.荧光分光光度计或具有350nm及430nm波长的荧光计. 3.3.打碎机. 4.试剂 本实验用水均为蒸馏水,试剂不加说明均为分析纯试剂. (1)偏磷酸-乙酸液:称取15g偏磷酸,加入40ml冰乙酸及250ml水,搅拌,放置过夜使之逐渐溶解,加水至500ml.4℃冰箱可保存7~10天. (2)0.15 mol/L硫酸:取10ml硫酸,小心加入水中,再加水稀释至1200ml. (3)偏磷酸-乙酸-硫酸液:以0.15mol/L硫酸液为稀释液,其余同4.1.配制. (4)50% 乙酸钠溶液:称取500g乙酸钠(CH3COONa??3H2O),加水至1000ml. (5)硼酸-乙酸钠溶液:称取3g硼酸,溶于100ml乙酸钠溶液(4.4)中.临用前配制. (6) 邻苯二胺溶液:称取20mg邻苯二胺,于临用前用水稀释至100ml. (7) 0.04%百里酚蓝指示剂溶液:称取0.1g百里酚蓝,加0.02mol/L氢氧化钠溶液,在玻璃研钵中研磨至溶解,氢氧化钠的用量约为10.75ml,磨溶后用水稀释至250ml. 变色范围:pH=1.2 红色 pH=2.8 黄色 pH>4.0 兰色 (8) 活性炭的活化:加200g炭粉于1L 1+9盐酸中,加热回流1~2h,过滤,用水洗至滤液中无铁离子为止,置于110~120℃烘箱中干燥,备用. (9)标准 抗坏血酸标准溶液(1mg/ml):准确称取50mg抗坏血酸,用溶液(4.1)溶于50ml容量瓶中,并稀释至刻度. 抗坏血酸标准使用液(100μg/ml): 取10ml抗坏血酸标准液,用偏磷酸-乙酸溶液稀释至100ml.定容前试pH值,如其pH>2.2时,则应用溶液(4.3)稀释. 标准曲线的制备:取下述"标准"溶液(抗坏血酸含量10μg/ml)0.5、1.0、1.5和2.0ml标准系列,取双份分别置于10ml带盖试管中,再用水补充至2.0ml. 5.操作步骤 5.1 样品制备 全部实验过程应避光. 称取100g鲜样,加100g偏磷酸-乙酸溶液,倒入打碎机内打成匀浆,用百里酚蓝指示剂调试匀浆酸碱度.如呈红色,即可用偏磷酸-乙酸溶液稀释,若呈黄色或兰色,则用偏磷酸-乙酸-硫酸溶液稀释,使其pH为1.2.匀浆的取量需根据样品中抗坏血酸的含量而定.当样品液含量在40~100μg/ml之间,一般取20g匀浆,用偏磷酸-乙酸溶液稀释至100ml,过滤,滤液备用. 5.2 氧化处理:分别取样品滤液及标准使用液各100ml于带盖三角瓶中,加2g活性炭,用力振摇1min,过滤,弃去最初数毫升滤液,分别收集其余全部滤液,即样品氧化液和标准氧化液,待测定. 5.3 各取5ml标准氧化液于2个50ml容量瓶中,分别标明"标准"及"标准空白". 5.4 各取5ml样品氧化液于2个50ml容量瓶中,分别标明"样品"及"样品空白". 5.5 于"标准空白"及"样品空白"溶液中各加5ml硼酸-乙酸钠溶液,混合摇动15min,用水稀释至50ml,在4℃冰箱中放置2h,取出备用. 5.6 于"样品"及"标准"溶液中各加入5ml50%乙酸钠溶液,用水稀释至50ml,备用. 5.7 荧光反应 取"标准空白"溶液,"样品空白"溶液及(5.6)中"样品"溶液各2ml,分别置于10ml带盖试管中.在暗室中迅速向各管中加入5ml邻苯二胺,振摇混合,在室温下反应35min,用激发光波长338nm、发射光波长420nm测定荧光强度.标准系列荧光强度分别减去标准空白荧光强度为纵坐标,对应的抗坏血酸含量为横坐标,绘制标准曲线或进行相关计算,其直线回归方程供计算时使用. 6. 计算 X=(c×V/m)×F×(100/1000) 式中:X-----样品中抗坏血酸及脱氢抗坏血酸总含量,mg/100g; c------由标准曲线查得或由回归方程算得样品溶液浓度,μg/ml; m-----试样质量,g; F------样品溶液的稀释倍数; V------荧光反应所用试样体积,ml. 例: 测定每一制备溶液的荧光强度.用标准溶液每ml含2.5μg、5.0μg、7.5μg及10.0μg,各标准浓度管读数减去相应的标准空白读数的各平均值做标准曲线. 由样品液读数减去样品液空白读数之值,从标准曲线上查得相应的抗坏血酸(μg/ml),按取样量及稀释率计算样品中抗坏血酸的含量. 如:取制备好的辣椒样品2.138g,稀释到100ml,氧化后分别取10ml滤液稀释到50ml 样品读数为23.34,样品空白读数为3.188,样品读数减去样品空白读数为20.152,查荧光标准曲线相当标准抗坏血酸的2.23μg. 2.23×100× 50× 100 ---------------- --------= 52(mg/100g) 2.138× 10 ×1000 7. 注意事项 7.1 大多数植物组织内含有一种能破坏抗坏血酸的氧化酶,因此,抗坏血酸的测定应采用新鲜样品并尽快用偏磷酸-醋酸提取液将样品制成匀浆以保存维生素C. 7.2 某些果胶含量高的样品不易过滤,可采用抽滤的方法,也可先离心,再取上清液过滤. 7.3活性炭可将抗坏血酸氧化为脱氢抗坏血酸,但它也有吸附抗坏血酸的作用,故活性炭用量应适当与准确,所以,应用天平称量.我们的实验结果证明,用2g活性炭能使测定样品中还原型抗坏血酸完全氧化为脱氢型,其吸附影响不明显. 2,4-二硝基苯肼法 1.原理 总抗坏血酸包括还原型、脱氢型和二酮古乐糖酸.样品中还原型抗坏血酸经活性炭氧化为脱氢抗坏血酸,再与2,4-二硝基苯肼作用生成红色脎,脎的含量与总抗坏血酸含量成正比,进行比色测定. 2.适用范围 GB12392-90 本方法适用于蔬菜、水果及其制品中总抗坏血酸的测定. 3. 仪器 3.1恒温箱:37±0.5℃ 3.2可见-紫外分光光度计 3.3打碎机 4.试剂 本实验用水均为蒸馏水,试剂纯度均为分析纯. 4.1 4.5mol/L硫酸:谨慎地加250ml硫酸(比重1.84)于700ml水中,冷却后用水稀释至1000ml. 4.2 85%硫酸:谨慎地加900ml硫酸(比重1.84)于100ml水中. 4.3 2%2,4-二硝基苯肼溶液:溶解2g 2,4-二硝基苯肼于100ml4.5mol/L硫酸内,过滤.不用时存于冰箱内,每次用前必须过滤. 4.4 2%草酸溶液:溶解20g草酸于700ml水中,稀释至1000ml. 4.5 1%草酸溶液:稀释500ml 2%草酸溶液到1000ml. 4.6 1%硫脲溶液:溶解5g硫脲于500ml 1%草酸溶液中. 4.7 2%硫脲溶液:溶解10g硫脲于500ml1%草酸溶液中. 4.8 1mol/L盐酸:取100ml盐酸,加入水中,并稀释至1200ml. 4.9 活性炭:将100g活性炭加到750ml 1mol/L盐酸中,回流1~2h,过滤,用水洗数次,至滤液中无铁离子(Fe3+)为止,然后置于110℃烘箱中烘干. 4.10 标准 (1)抗坏血酸标准溶液(1mg/ml):溶解100mg纯抗坏血酸于100ml 1%草酸溶液中. (2)标准曲线绘制 加1g活性炭于50ml标准溶液中,摇动1min,过滤. 取10ml滤液放入500ml容量瓶中,加5.0g硫脲,用1%草酸溶液稀释至刻度.抗坏血酸浓度为20μg/ml. 取5,10,20,25,40,50,60ml稀释液,分别放入7个100ml容量瓶中,用1%硫脲溶液稀释至刻度,使最后稀释液中抗坏血酸的浓度分别为1,2,4,5,8,10及12μg/ml. 按样品测定步骤形成脎并比色. 以吸光值为纵坐标,以抗坏血酸浓度(μg/ml)为横坐标绘制标准曲线. 5. 操作步骤 5.1样品制备 全部实验过程应避光. 5.1.1鲜样制备:称100g鲜样和100g2%草酸溶液,倒入打碎机中打成匀浆,取10-40g匀浆(含1-2mg抗坏血酸)倒入100ml容量瓶中,用1%草酸溶液稀释至刻度,混匀. 5.1.2干样制备:称1-4g干样(含1-2mg抗坏血酸)放入乳钵内,加入1%草酸溶液磨成匀浆,倒入100ml容量瓶中,用1%草酸溶液稀释至刻度,混匀. 5.1.3将上述两液过滤,滤液备用.不易过滤的样品可用离心机沉淀后,倾出上清液,过滤,备用. 5.2氧化处理:取25ml上述滤液,加入0.5g活性炭,振摇1min,过滤,弃去最初数毫升滤液.取10ml此氧化提取液,加入10ml 2%硫脲溶液,混匀. 5.3呈色反应 5.3.1于三个试管中各加入4ml稀释液.一个试管作为空白,在其余试管中加入1.0ml 2%2,4-二硝基苯肼溶液,将所有试管放入37±0.5℃恒温箱或水浴中,保温3h. 5.3.2 3h后取出,除空白管外,将所有试管放入冰水中.空白管取出后使其冷到室温,然后加入1.0ml 2%2,4-二硝基苯肼溶液,在室温中放置10~15min后放入冰水内.其余步骤同样品. 5.3.3 85%硫酸处理:当试管放入冰水后,向每一试管中加入5ml85%硫酸,滴加时间至少需要1min,需边加边摇动试管.将试管自冰水中取出,在室温放置30min后比色. 5.3.4 比色:用1cm比色杯,以空白液调零点,于500nm波长测吸光值. 6. 计算 同荧光法. 7. 注意事项 7.1 大多数植物组织内含有一种能破坏抗坏血酸的氧化酶,因此,抗坏血酸的测定应采用新鲜样品并尽快用2%草酸溶液制成匀浆以保存维生素C. 7.2 若溶液中含有糖,硫酸加得太快,溶解热会使溶液变黑. 7.3 试管自冰水中取出后,颜色会继续变深,所以,加入硫酸后30分钟应准时比色. 碘滴定法一、目的及原理本试验是利用碘酸钾做氧化剂.即在一定量的盐酸酸性试液中加碘化钾—淀粉指示剂,用已知浓度的碘酸钾滴定.当碘酸钾滴入后即释放出游离的碘,此碘被维生素C还原,直至维生素C完全氧化后,再滴以碘酸钾液时,释放出的碘因无维生素C的作用,可使淀粉指示剂呈蓝色,即为中点,其反应如下: KIO3 + 5KI + 6HCl→6KCl + 3H2O + 3 I2 二、药品与器材柑橘、鲜枣、洋葱、甘蓝、辣椒等. 碘酸钾、碘化钾、淀粉,2%盐酸. 研钵、烧杯、100ml容量瓶、0.5、2、5ml移液管、滴定管、漏斗、纱布、分析天平. 三、操作与步骤 1.试剂制备(1)0.5%淀粉液:称取可溶性淀粉0.5g,用蒸馏水调成浆状,注入100ml蒸馏水,煮沸至透明状,冷后用棉花过滤. (2)0.001N KIO3液:精确称取KIO3 0.3568g(KIO3预先在102℃烘2小时,在干燥器中冷却备用), 准确配成1000ml,得到0.01N KIO3液.再稀释10倍即为0.001N. 2.样品试液的制备:将果蔬样品洗净,用纱布拭干其外部所附着的水分,若样品清洁可不必洗涤.样品若为大型果蔬,先纵切为4―8等分,取其20―30g为一份,除去不能食用部分,切碎.若为大型叶菜,沿中脉切分为二分,取其一分切碎.称取20g作分析用. 将称取的样品放研钵中,加2%的盐酸5―10ml,研磨至呈浆状.小心无损地移研钵中样品于100ml容量瓶中,研钵用2%盐酸液冲洗后,亦倒入量瓶中,并加2%盐酸至100ml,充分混合.用清洁干燥二层纱布过滤入干燥的烧杯中,滤液作测定用. 3.样品液的测定:在50ml的烧杯中,用移液管注入1%的KI0.5ml,0.5%淀粉液2ml,以及上述制得的试液5ml;再加蒸馏水至总体积10ml(加2.5毫升).用0.001N KIO3液滴定,要一滴一滴加入,并时时摇动烧杯,至微蓝色不褪为终点(一分钟不褪为止).记录所用KIO3液毫升数. 同上法再测定3次.用各次测定的平均值,计算维生素C含量. 计算公式: V X 0.088 b W = ―――――――― X — X 100 B a W = 100克样品含的抗坏血酸毫克数. V = 滴定样品所用的KIO3毫升数. 0.088 = 1毫升0.001N 碘酸钾溶液相当的抗坏血酸的量(mg/ml). B = 滴定时所用样品溶液毫升数. b = 制成样品液的总毫升数. a = 样品的克数. 四、结果与计算 1.将测定的数据填入下列表中 样品名称 样品重量(g) 样品液总体积(ml) 滴定时用样品液的量(ml) 滴定样品所用KIO3量(ml) 维生素C含量(mg/100g) 1 2 3 4 平均 2.列出计算式并计算结果其实测定Vc方法有很多种,还有磷钼酸铵法,间接碘量法等等.其中荧光法和2,4-二硝基苯肼法为国标方法.常用的一般为上面4种.


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咸安区15340961474: 滴定液的标定有几种方法?说出每种方法的优缺点? -
平连美珞: 有基准试剂直接标定和标准溶液间接标定两种方法.以标定盐酸标准滴定溶液为例:直接标定是用无水碳酸钠基准试剂进行标定,优点是准确度高,需要烘干无水碳酸钠,时间较长;间接标定是用氢氧化钠标准滴定溶液进行标定,优点是速度快,不用很长时间,缺点是误差较大,因为氢氧化钠标准溶液的浓度有误差,另外要用两只滴定管,进行4次读数,滴定管的读数误差较大.分析室普遍采用基准试剂直接标定法.

咸安区15340961474: 标准溶液的配置方法有哪些 -
平连美珞: 配制标准溶液的方法一般有以下两种: (1) 直接配制法 在分析天平上准确称取一定量已干燥的基准物溶于水后,转入已校正的容量瓶中用水稀释至刻度,摇匀,即可算出其准确浓度. (2) 标定法 很多物质不符合基准物生物条件,不能直接配制标准溶液.一般先将这些物质配成近似所需浓度溶液,再用基准物测定其准确浓度.标定的方法有直接标定和间接标定两种,间接标定的系统误差比直接标定要大些.

咸安区15340961474: 标定标准溶液的方法有几种? -
平连美珞: 液体流量标定方法有: 静态容积法标定 静态称重法标定 动态容积法标定 动态称重法标定 标准体积管法标定 标准表法标定 气体流量标定方法有: 钟罩法标定 P.V.T.t法标定 标准表法标定(含音速喷嘴)一般作为原级量值传递,液体用称重法,气体用P.V.T.t法 一般生产流量计厂家标定流量计时,用标准表法或者标准表法和称重法结合比较多

咸安区15340961474: 表示标准溶液浓度的方法有几种?各有何优缺点 -
平连美珞: 两种: 1、直接法:准确称量基准物质,溶解后定容至一定体积;优点:易于准确称量,遇空气不潮解. 缺点:不能得到符合基准物条件的物质.2、标定法:先配制成近似需要的浓度,再用基准物质或用标准溶液来进行标定. 优点:溶液性质稳定.缺点:这种配置方法比较费事,但大多数标准溶液都是这样配置的.扩展资料: 准确称量一定量的基准物质,用适当溶剂溶解后定容至容量瓶里.如果试剂符合基准物质的要求 (组成与化学式相符、纯度高、稳定),可以直接配制标准溶液,即准确称出适量的基准物质,溶解后配制在一定体积的容量瓶内.可由下式计算应称取的基准物质的重量W:W=ΜV基准物质的摩尔质量.参考资料来源:百度百科-标准溶液

咸安区15340961474: .标准溶液配制 -
平连美珞: 配制方法有两种,一种是直接法,即准确称量基准物质,溶解后定容至一定体积;另一种是标定法,即先配制成近似需要的浓度,再用基准物质或用标准溶液来进行标定. 已知准确浓度的溶液,在容量分析中用作滴定剂,以滴定被测物质. 如果试剂符合基准物质的要求 (组成与化学式相符、纯度高、稳定),可以直接配制标准溶液,即准确称出适量的基准物质,溶解后配制在一定体积的容量瓶内.可由下式计算应称取的基准物质的重量W:W=ΜV·基准物质的摩尔质量.式中Μ和V分别为所需配制的溶液的摩尔浓度和体积.利用上式可计算出标准溶液的浓度. 如果试剂不符合基准物质的要求,则先配成近似于所需浓度的溶液,然后再用基准物质准确地测定其浓度,这个过程称为溶液的标定.

咸安区15340961474: 标准溶液配制的直接法和标定法有什么区别 -
平连美珞: 直接法就是直接精确称量溶质和溶剂,然后配置成标准溶液. 标定法就是称量配置完成以后,再用另一种标准物去滴定待测标准液,这样算出来待测标准液的精确浓度. 后一种标定法的更精确.

咸安区15340961474: 国家标准样品配制的标准样品用标定吗 -
平连美珞: 1)用基准物质配标准溶液标定:需用容量瓶移液管进行重复测定比较便增加容量瓶移液管产误差机较 2)称取基准物质直接标定:产误差机比较少准确度较高进行重复测定比较麻烦 这样的提问没有意义 建议自己下去查查资料

咸安区15340961474: 卡尔费休试剂、标准溶液都是什么意思啊!谢谢 -
平连美珞: 卡尔·费休水分测定原理与技术卡尔·费休法简称费休法,是1935年卡尔·费休(KarlFj scher)提出的测定水分的容量分拆方法.费休法是测定物质水分的各类化学方法中,对水最为专一、最为准确的方法.虽属经典方法但经过近年改进,提...

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